kraken是基于k-mer精确比对,并采用最LCA投票结果快速宏基因组DNA序列进行物种注释的软件。
图. Kraken2分类基本原理
该文章于2014年发表于Genome Biology,目前引用过两千次[1]。详见
《Kraken:使用精确比对的超快速宏基因组序列分类软件》
kraken1对内存要求大限制了部分用户使用,kraken2优化了这一问题,而且输出结果格式更友好,下游分析更方便,文章于2019年再次发表于Genome Biology,一年被引231次[2]。
主页:
https://github.com/DerrickWood/kraken2
帮助文档:
https://github.com/DerrickWood/kraken2/blob/master/docs/MANUAL.markdown
kraken2
程序主要包括
kraken2
和
kraken2-build
两条命令,还依赖一些小程序和脚本。所有程序将安装于同一目录。如果安装后你移动安装文件格,需要修改
kraken2
脚本中的
$KRAKEN2_DIR
对应新的位置。
推荐conda安装,一条命令搞定
conda install kraken2
另一种安装方法:可选git或wget下载,不推荐
cd ~/software
git clone git@github.com:DerrickWood/kraken2.git
# 或wget下载并解压
wget https://github.com/DerrickWood/kraken2/archive/master.zip
unzip master.zip
# 安装,设置你要安装的位置
KRAKEN2_DIR=~/soft/kraken2
./install_kraken2.sh $KRAKEN2_DIR
# 添加到环境变量
cp $KRAKEN2_DIR/kraken2{,-build,-inspect} $HOME/bin
版本和升级
记录软件版本:
kraken2 --version # Kraken version 2.0.9-beta
conda update kraken2 -c bioconda
Kraken2数据库
Kraken2数据库至少包括3个文件
以上文件为快速读取,全为二进制文件。
如果仅使用kraken2,除以上三个文件外,其它的文件在空间有限下可以删除。如果要使用bracken时,仍需保留其他文件,用于构建索引等。
标准数据库构建
需要下载50G数据,过程将消耗超100GB的空间。
# 下载数据库,先设置存放位置
DBNAME=~/db/kraken2/201127
mkdir -p $DBNAME
# 可调线程数据,加速构建过程
kraken2-build --standard --threads 24 --db $DBNAME
此步下载数据>50GB,下载速度由网络决定。索引时间4小时33分,多线程最快35min完成
标准模式下只下载5种数据库:古菌archaea、细菌bacteria、人类human、载体UniVec_Core、病毒viral
个性数据库构建
更多数据库构建的参数,详见kraken2-build -h
使用方法:kraken2-build 任务类型 可选参数
Usage: kraken2-build [task option] [options]
以下任务选择其中之一
Task options (exactly one must be selected):
--download-taxonomy 下载物种信息Download NCBI taxonomic information
--download-library TYPE 下载数据库类型,包括14种Download partial library
(TYPE = one of "archaea", "bacteria", "plasmid",
"viral", "human", "fungi", "plant", "protozoa",
"nr", "nt", "env_nr", "env_nt", "UniVec",
"UniVec_Core")
--special TYPE 特殊数据库,包括3种Download and build a special database
(TYPE = one of "greengenes", "silva", "rdp")
--add-to-library FILE 添加文件到库中 Add FILE to library
--build 建索引Create DB from library
(requires taxonomy d/l'ed and at least one file
in library)
--clean 清理Remove unneeded files from a built database
--standard 下载标准库Download and build default database
--help 帮助Print this message
--version 版本信息Print version information
Options:
--db NAME 库位置Kraken 2 DB/library name (mandatory except for
--help/--version)
--threads # 线程数Number of threads (def: 1)
--kmer-len NUM K-mer长度 length in bp/aa (build task only;
def: 35 nt, 15 aa)
--minimizer-len NUM Minimizer length in bp/aa (build task only;
def: 31 nt, 15 aa)
--minimizer-spaces NUM Number of characters in minimizer that are
ignored in comparisons (build task only;
def: 6 nt, 0 aa)
--protein Build a protein database for translated search
--no-masking Used with --standard/--download-library/
--add-to-library to avoid masking low-complexity
sequences prior to building; masking requires
dustmasker or segmasker to be installed in PATH,
which some users might not have.
--max-db-size NUM Maximum number of bytes for Kraken 2 hash table;
if the estimator determines more would normally be
needed, the reference library will be downsampled
to fit. (Used with --build/--standard/--special)
kraken2的库类型包括:”archaea”, “bacteria”, “plasmid”, “viral”, “human”, “fungi”, “plant”, “protozoa”, “nr”, “nt”, “env_nr”, “env_nt”, “UniVec”, “UniVec_Core”
archaea bacteria plasmid viral human fungi plant protozoa nr nt env_nr env_nt UniVec
数据越多,需要的内存也多,请谨慎选择。
以下实例供参考
# 下载数据库,先设置存放位置
DBNAME=~/db/kraken2/201201
mkdir -p DBNAME
cd $DBNAME
# 下载物种注释,259
kraken2-build --download-taxonomy --threads 24 --db $DBNAME
# 下载非默认数据库中的真菌库 1.33G
kraken2-build --download-library fungi --threads 24 --db $DBNAME
# 批量下载,非标准数据库
for i in archaea bacteria plasmid viral human fungi plant protozoa nr nt env_nr env_nt UniVec; do
kraken2-build --download-library $i --threads 24 --db $DBNAME
# 确定的库建索引
kraken2-build --build --threads 24 --db $DBNAME
注:NCBI上的三个重要的数据库—NR/NT,Taxonomy和RefSeq。NR(Non-Redundant Protein Sequence Database)非冗余蛋白库,所有GenBank+EMBL+DDBJ+PDB中的非冗余蛋白序列,对于所有已知的或可能的编码序列,NR记录中都给出了相应的氨基酸序列(通过已知或可能的读码框推断而来)以及专门蛋白数据库中的序列号。NR库相当于一个以核酸序列为基础的交叉索引,将核酸数据和蛋白数据联系起来。NT(Nucleotide Sequence Database),核酸序列数据库,是NR库的子集。NCBI的分类数据库,包括大于7万余个物种的名字和种系,这些物种都至少在遗传数据库中有一条核酸或蛋白序列。其目的是为序列数据库建立一个一致的种系发生分类学。RefSeq(the reference sequence database,https://www.ncbi.nlm.nih.gov/refseq/ ).参考序列数据库,包含RefSeq_genomic(NCBI genomic reference sequences),RefSeq_protein(NCBI protein reference sequences)和RefSeq transpans(NCBI transpans reference sequences)具有生物意义上的非冗余基因,转录本和蛋白质序列,是经过NCBI和其他组织校正的数据库,使用人类基因命名委员会定义的术语,并且包括了官方的基因符号和可选的符号。[3]
kraken2 --db $DBNAME seqs.fa
其它参数解析:
多线程:—threads NUM
快速操作:—quick 检索第一次匹配即停止;—min-hits 多个匹配结果才确定;
序列过滤:分类—classified-out、末分类的—unclassified-out结果输出到文件
输出结果:为标准输出,可|重定向,也可—output写入文件
输入文件:默认为fasta,可—fastq-input指定为fastq
输入压缩文件:—gzip-compressed or —bzip2-compressed
输入文件自动检测:默认为自动检测,你可以帮忙指定类型 —fasta-input, —fastq-input, —gzip-compressed, and/or —bzip2-compressed
双端数据:2开始检测双端数据了, kraken2 —paired —classified-out cseqs#.fq seqs_1.fq seqs_2.fq
--use-names
输出物种名(ID)
--report
输出报告
--report-zero-counts
输出所有物种,方便样本合并比较(sort -k5,5n)
--use-mpa-style
输出metaphlan2格式
输出文件格式
Kraken标准输出格式
C/U代表分类classified或非分类unclassifed
序列ID
物种注释
比序列注释的区域,如98|94代表左端98bp,右端94bp比对至数据库
LCA比对结果,如”562:13 561:4”代表13 k-mer比对至物种#562,4 k-mer比对至#561物种
报告输出格式
包括6列,方便整理下游分析。
百分比
count
count最优
(U)nclassified, (R)oot, (D)omain, (K)ingdom, (P)hylum, (C)lass, (O)rder, (F)amily, (G)enus, or (S)pecies. “G2”代表位于属一种间
NCBI物种ID
科学物种名
自定义数据库
默认的数据库修改:names.dmp、nodes.dmp和*.accession2taxid。
—download-library 下载数据库
—add-to-library
—skip-maps 跳过某数据库
常用数据库
archaea: 古菌686M, RefSeq complete archaeal genomes/proteins
bacteria: 细菌47G, RefSeq complete bacterial genomes/proteins
plasmid: 质粒,RefSeq plasmid nucleotide/protein sequences
viral: 病毒262M, RefSeq complete viral genomes/proteins
human: 人3.1G, GRCh38 human genome/proteins
fungi: 真菌,RefSeq complete fungal genomes/proteins
plant: 植物,RefSeq complete plant genomes/proteins
protozoa: 原始动物,RefSeq complete protozoan genomes/proteins
nr: 非冗余蛋白库,NCBI non-redundant protein database
nt: 非冗余核酸库,NCBI non-redundant nucleotide database
env_nr: 非冗余环境蛋白,NCBI non-redundant protein database with sequences from large environmental sequencing projects
env_nt: 非冗余环境核酸,NCBI non-redundant nucleotide database with sequences from large environmental sequencing projects
UniVec: 常用污染序列,如载体、头、引物等NCBI-supplied database of vector, adapter, linker, and primer sequences that may be contaminating sequencing projects and/or assemblies
UniVec_Core:载体核心库2M,用于去除污染序列, A subset of UniVec chosen to minimize false positive hits to the vector database
标准模式下只下载5种数据库:古菌archaea、细菌bacteria、人类human、载体UniVec_Core、病毒viral
我们可以手动下载指定数据库
kraken2-build --download-library plasmid --db $DBNAME
# Downloading plasmid files from FTP...
kraken2-build --download-library fungi --db $DBNAME
下载后需要--build
来建索引,nr和env_nr需要—protein参数, 而UniVec 和UniVec_Core不能用—protein选项
(可选)自行添加基因组,需要满足以下两点要求
fasta格式,可以多个文件
-
必须包括NCBI物种ID,如>sequence16|kraken:taxid|32630 Adapter sequence
# 添加单个序列
kraken2-build --add-to-library chr1.fa --db $DBNAME
# 批量添加序列
for file in chr*.fa
kraken2-build --add-to-library $file --db $DBNAME
数据库确定后,建索引
kraken2-build --build --db $DBNAME
非NCBI数据库
支持核酸数据库Greengene、RDP、SILVA数据库制作。它们的物种注释不遵循NCBI的Taxonomy标准。
Greengenes (greengenes), 所有可用的16S
RDP (rdp), 细菌和古菌16S
SILVA (silva), 核糖体小亚基99%非冗余NR99序列集
以里以SILVA为例,因为它不仅包括16S,还包括18S,更适合宏基因组数据
kraken2-build --db $DBNAME --special silva
检查数据库内容(可选)
kraken2-inspect —db EXAMPLE_DB | head -5
更多需求,请阅读官方帮助文档:https://github.com/DerrickWood/kraken2/blob/master/docs/MANUAL.markdown
找不到Perl模块
kraken2 --version
错误信息:Fcntl.c: loadable library and perl binaries are mismatched (got handshake key 0xdb00080, needed 0xde00080)
解决方法:手动设置PERL5LIB
# 查看软件安装目录
type kraken2
kraken2 is hashed (/mnt/bai/yongxin/miniconda2/envs/kraken2/bin/kraken2)
# 设置环境位置env
e=/mnt/bai/yongxin/miniconda2/envs/kraken2
PERL5LIB=${e}/lib/5.26.2:${e}/lib/5.26.2/x86_64-linux-thread-multi
找不到libiconv.so.2
方法1. 直接conda安装库
conda install libiconv
方法2. 查找安装位置,链接到env的lib目录
locate libiconv.so.2
ln -s 找到的位置 软件环境的lib
Reference
Wood, Derrick E., and Steven L. Salzberg. “Kraken: ultrafast metagenomic sequence classification using exact alignments.” Genome biology 15.3 (2014): R46.
Derrick E. Wood, Jennifer Lu & Ben Langmead. (2019). Improved metagenomic analysis with Kraken 2. Genome Biology 20, 257, doi: https://doi.org/10.1186/s13059-019-1891-0
三种NCBI常见数据库 https://www.sohu.com/a/211785974_99908466
10000+:菌群分析 宝宝与猫狗 梅毒狂想曲 提DNA发Nature Cell专刊 肠道指挥大脑
系列教程:微生物组入门 Biostar 微生物组 宏基因组
专业技能:学术图表 高分文章 生信宝典 不可或缺的人
一文读懂:宏基因组 寄生虫益处 进化树
必备技能:提问 搜索 Endnote
文献阅读 热心肠 SemanticScholar Geenmedical
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生物科普: 肠道细菌 人体上的生命 生命大跃进 细胞暗战 人体奥秘
为鼓励读者交流、快速解决科研困难,我们建立了“宏基因组”专业讨论群,目前己有国内外5000+ 一线科研人员加入。参与讨论,获得专业解答,欢迎分享此文至朋友圈,并扫码加主编好友带你入群,务必备注“姓名-单位-研究方向-职称/年级”。PI请明示身份,另有海内外微生物相关PI群供大佬合作交流。技术问题寻求帮助,首先阅读《如何优雅的提问》学习解决问题思路,仍未解决群内讨论,问题不私聊,帮助同行。
学习16S扩增子、宏基因组科研思路和分析实战,关注“宏基因组”
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简介kraken是基于k-mer精确比对,并采用最LCA投票结果快速宏基因组DNA序列进行物种注释的软件。图. Kraken2分类基本原理该文章于2014年发表于Genome Biolo...
一、软件安装与数据库下载
1.Kraken2安装
Kraken2是一个基于k-mer算法的高精度宏基因组序列分类软件,能够快速的将测序reads进行物种分类。
使用conda一键安装,要先安装好anaconda或者miniconda
conda install -y kraken2
输入krakek2 --help 出现如下所示帮助文档,则表示安装成功。
2.Bracken安装
bracken是一种从宏基因组数据中高度准确的计算物种丰度的统计方法。
同样使用conda一键安装
conda install -
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有时间可以写一个megan的中文教程。详细介绍软件、数据库安装,示例数据分析和结果描述。这个也引用了几千次,可
大家好。 NCBI 为其参考序列采用了一种新格式。 MetaAnnotator 目前无法在最新版本的 NCBI ref seq 上工作。 我会尽快更新程序。 您可以在此之前使用存档版本 ftp://ftp.ncbi.nlm.nih.gov/genomes/archive/old_refseq/Bacteria/all.fna.tar.gz。 分类注释是分析宏基因组数据的关键第一步。 尽管开发了很多工具,但性能(运行时间和准确性)仍然不能令人满意,特别是当数据库中不存在接近的物种级参考时。 我们提出了一种新的注释工具 MetaAnnotator,用于注释宏基因组学读取,当数据库中仅存在属级引用时,该工具显着优于所有现有工具。
NR数据库的物种注释
1.创建NR子库
为什么要创建nr或nt数据库的子库,因为这两个库数据量巨大,若只专注某个领域而非全部,则在对自身领域进行注释时就会耗费大量时间,为了节省时间,就需要在原来nr/nt数据库的基础上构建相对的子库。
构建方法如下:
方法一:从NCBI官网下载相应物种的Accession ID
在2017年之后的nr/nt数据库变成不再支持gi号搜索的。所以我们不可以根据gi号来分离并构建对应的子库,那么我们就需要查看新版本的nr/nt库的序列的id特征,发现他们变成了accessio
最早接触Kraken2这个软件是在宏基因组,但官网上说其实这个软件也是可以用于16S物种注释的。当时没怎么在意,后面发现有个美国肠道微生物检测公司Thryve是使用这个软件进行物种注释的。最近发现2020年9月的一篇文章是比较了kraken2和qiime2的物种注释结果,详细见宏基因组公众号的文章。
今天我要说的是亲自拿一个肠道微生物的样本测试下这个软件的分类效果,再和自己用的qiime2流程获得的结果比较下,绝知此事要躬行呀。
首先说一个令我震惊的发现,作者发现使用qiime2进行物种分类的时候,使用1
以下是一个 kraken2 参数的例子:
kraken2 --db /path/to/database --threads 8 --paired /path/to/reads_1.fastq /path/to/reads_2.fastq --output /path/to/output/file
请注意,这只是一个示例,具体的参数设置应该根据你的实验设计和数据集进行调整。