Use of Rabbit Eyes in Pharmacokinetic Studies of Intraocular Drugs

Introduction

眼内药物递送的出现之前，药物治疗的眼内疾病的主要关注的是与该药物能渗透到眼睛的效率。血眼屏障防止许多物质，包括药物，扩散进入眼睛。因此，可能不容易获得的高于治疗水平的药物的浓度。眼内药物施用方法，包括前房内和玻璃体内注射，能够直接绕过血眼屏障 ^1-3，使药物治疗浓度可在眼 ^4,5 来实现。

因此，玻璃体内给药已成为治疗几种眼疾病 ^5,6- 一种流行的方法。例如，玻璃体内注射被广泛用于与年龄有关的黄斑变性，糖尿病性视网膜病变，视网膜静脉阻塞，和眼内感染 ^7-10 进行。特别是，由于引进抗VEGF药物，玻璃体内注射的次数已显着地增加了对视网膜疾病的治疗。因此，了解这些药物的眼内药物动力学，用于评估药物治疗的有效性和安全性是重要的。

虽然药物的眼内施用被认为是眼病药物治疗的重大突破，监控眼球内的药物浓度是技术要求高。因为人眼仅含有少量的水状液（约200微升）和玻璃体（约4.5毫升， 表1） 的，它在技术上是难以得到足够量的眼内流体的测量药物浓度。此外，被用于获得眼部流体的方法，如玻璃体攻丝或前房穿刺放，可能会损坏眼组织，并导致严重的并发症，例如白内障，眼内炎，或视网膜脱离 ^11,12。因此，动物模型中的常用的眼内药物 ¹³ 的药代动力学研究中使用。在这些动物模型中，兔或猴是最常用的动物。

兔子，这是在家庭兔科的顺序兔形目的小型哺乳动物，在世界一些地区被发现。因为兔子是没有攻击性，他们很容易处理，在实验中使用，并观察。成本较低，动物，类似于眼睛大小，以人类随时可用性和大型数据库的信息进行比较青睐执行使用兔眼药代动力学研究。在本文中，对于眼内药物在兔眼药代动力学研究的协议描述。

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Protocol

我们的协议如下首尔国立大学盆唐医院的机构动物护理和使用委员会（IACUC），其批准的所有在该协议提出的动物的程序及动物护理方法的指导方针。该IACUC是完全符合指南的实验室动物的护理和使用（2011）第八版。所有的程序都用坚持协会的研究在视觉与眼科声明对动物眼科和视觉研究使用动物的指导进行。单独的笼子被用于房屋的兔子。另外的手术或制剂在进行该实验前（即，灭菌）可以不需要。

1.药物眼内注射到兔眼

麻醉健康新西兰白兔体重1.5-2公斤，盐酸替来他明和唑拉西泮的混合肌肉注射盐酸盐（15毫克/千克）和赛拉嗪盐酸盐（5毫克/千克）。通过监控眼睑（闪烁）反射或夹捏耳廓验证麻醉。
注：如果眼内药物结合眼部色素，结合度可能会导致药物的药代动力学眼部修饰。例如，在有色兔的玻璃体和房水的颜料结合药的半衰期可以增加相比，在白兔 ^14。在这种情况下，人的眼睛具有不同程度的色素沉着和白化兔眼可能不代表人类对应从着色兔眼所获得的数据可以更相似的，适用于人眼。因此，考虑药物相互作用色素，使用色素或白兔应慎重考虑，其结果应与兔的应变（色素）来解释。然而，白兔被推荐用于比较药动学性质如对d研究地毯颜料相互作用可能在比较的混杂因素。
1. 申请用1％盐酸丙美卡因眼科眼药水局部麻醉剂。使用兽医软膏（2％羟丙基甲基纤维素），防止眼睛干涩，直到从麻醉中恢复。
  注意：切勿将无人看管的兔子，而麻醉。
扩张瞳孔与盐酸去氧肾上腺素和托的一至两滴。
对于眼内注射前手术准备，应用5-10％碘伏到用棉签 ⁵ 眼周皮肤。放置5-10％碘伏一滴在眼睛的结膜。
辖眼压的药物无论是玻璃体或使用房内无菌技术 ^5。
注：在全身循环吸收的药物也可能会渗透到对侧眼。当药物施用于双眼，一只眼睛的药物浓度可通过药物注射到受影响另一只眼睛。如果它被确认对侧注射的影响可以忽视，因为在循环的药物不能渗透另一只眼睛，使用双眼为眼内注射的，可以认为，因为它是经济的并最小化牺牲动物的数量在药代动力学研究。对于下面的眼内注射全身浓度药代动力学研究，只使用一只眼睛是适当的。
1. 用于玻璃体内注射，使用地下30针和任一商业1毫升注射器，胰岛素注射器，或玻璃注射器垂直于巩膜表面 ⁵ 注入药物后面的颞象限手术缘玻璃体内1毫米。
  注：药物用于前房和玻璃体内注射的体积变化取决于药物进行调查。有关使用兔眼抗VEGF剂的药物动力学实验中，先前的研究中所用0.025，0.05（最常见的），或者0.1米升贝伐单抗或兰尼单抗的前房或玻璃体内注射的。在我们以前的上的抗血管内皮细胞生长因子将0.05ml贝伐单抗 ^15，0.025 毫升兰尼单抗，或0.03毫升VEGF-陷阱 ¹⁶ 的眼内药代动力学研究中使用。无穿刺最大的安全的音量被认为是0.1毫升，尽管很少有证据支持这一 ^17。如果过度体积被注入或者前房内或玻璃体内，眼内压大大增加。除了视神经损害由增加的眼内压（IIOP）直接造成的，即青光眼视神经损伤，在极端情况下，IIOP导致受损眼灌注和视网膜中央动脉阻塞，它类似于在大脑中风。
2. 对于前房内注射剂，通过与锥角巩膜缘插入地下30针上和推进它每年注射药物进入前房rallel虹膜平面以减少外伤的虹膜或透镜的危险。
  注意：根据药物制剂，针大于30 G能够被使用。需要较大号针头的条件包括含有药物的微球，大蛋白质药物，和高粘度的制剂。
3. 注射后，压缩注射部位用无菌棉尖涂药以促进伤口愈合。
  注意：通常情况下，30秒就足够了伤口愈合，当一个地下30针被用于眼内注射。然而，如果是用于眼内注射较大号针头，更长的时间将是适当的用于伤口的密封，以减少从巩膜创口的泄漏。要检查巩膜创口泄漏是很重要的，以确保在眼内注射后立即使用的眼内药物的量是相同的注射量，特别是如果使用较大号针头。
每天观察处理后的兔子一周，每周事后一次，重症眼内炎症（结膜充血和积脓）的任何迹象，直到安乐死。
注：镇痛药注射后使用地下30针是不伴随手术后疼痛微创过程不需要如眼内注射。不要返回已动过手术，以该公司的其他动物，直到完全康复的动物。

2.样品制备

对摘除术，安乐死眼内药物注射后的不同时间点的兔子（例如，1小时或1，2，5，9，14，或30天）。
注意：这些时间点取决于所关注的药物和已知的药物动力学曲线。对于每个时间点，使用至少两个眼球 ^13。对于可靠的数据的质量，采样时间应仔细均衡采样选择，至少四个时间点的药物 ¹³ 的两个半生命中的至少一个时间范围）18，特别是大于1的第一个24小时的过程中的时间点是至关重要的。因此，对于大分子（> 1000道尔顿 ^）18，一个采样周期，如1小时和1，2，5，9，14，30天 ¹⁹ 可以是一个很好的选择。对于小分子（≤1,000道尔顿），1，2，4和8小时，1，3和7天可以是一个选项 ^20。根据不同的分子量，采样周期可进一步修饰。
1. 安乐死，辖10毫升15％静脉氯化钾与替来他明盐酸盐，唑拉西泮盐酸盐（15毫克/千克），和盐酸赛拉嗪（5mg / kg的）的混合物中的肌肉内注射麻醉家兔后迅速。
打开与眼睑拉钩睑裂。做一个360°结膜切口2-3毫米后角膜缘和向后通过解剖的C扩展它onjunctiva和来自世界各地眼球筋膜囊。
切开眼外肌接近其插入到全球。钳与弯钳视神经然后剪切镊子和地球之间的神经。取出眼球本身同时使周围组织完好无损。眼球摘除后，立即冻结了眼球，并将它们存储在-80℃。
注意：有可能是立即冻结两个选项。如果药物浓度在非常早的阶段测量（即小于1小时），液氮可能更适合，以保证眼球的更好及时冻结。然而，对于以后期间，冰可用于立即冷却该眼球，然后冰柜可以用于眼球储存在-80℃。
获得眼球的所有时间点后，将冷冻的眼球分离成三个室，玻璃体，房水和视网膜/脉络膜。分离defros之前，这些车厢婷。
注意：用于分离成三个隔间的最重要的一点是该过程的速度。眼球应非常迅速分离除霜之前，可以在冰上进行的过程延迟解冻。
1. 要打开全球，做一个切口在角膜缘（300℃以上）用手术刀刀片。获得在虹膜，房水前的冷冻室。
2. 通过拉动和使用组织钳取出谴责某个冰冻的虹膜和晶状体。当玻璃体访问时，从剩余的组织（视网膜/脉络膜/巩膜）分离出来获得冷冻玻璃。
3. 用15号解剖刀刀片，从底层巩膜分开视网膜/脉络膜组织。
用于免疫测定，除霜房水样本，并测量各样品的体积。通过从含管的t减去空管的重量测量冷冻样品的重量他冷冻样本。
注意：由于冷冻样品的比重大致为1，各样品的重量可用于计算样品的体积。
称量玻璃体样品，除霜的样品中，并在4℃下过夜溶解它们于1.0ml含有旋转器上的1％牛血清白蛋白的磷酸盐缓冲盐水。然后，离心将样品在387×g离心10分钟 ^21。
称取冷冻视网膜/脉络膜样品同质化。添加蛋白抽提试剂与组织的1:10（1克组织/ 10 mL试剂的）试剂的比率。用预先冷却microhomogenizer均质化组织。离心10分钟，裂解的样品在12,000-20,000 XG并将上清液转移到一个冷却的EPP管。

3.免疫

注：若干分析方法可用于蛋白质浓度的测定。选择一个合适的定量分析方法，Depending该检测范围。简言之，高效液相色谱法的选择离子监测模式可检测分子的皮克水平，而LC-MS / MS可以检测蛋白质的纳克和皮克水平与MRM / PRM模式分析，分别。 ELISA法的检测极限被认为是在皮克水平。

对于间接酶联免疫吸附测定（ELISA）来测量抗VEGF剂的浓度，使用ELISA试剂盒在96孔板检测感兴趣的药物和生成的已知的药物浓度的标准曲线。
1. 稀玻璃体，房水，并用在1×磷酸盐缓冲盐水（PBS）的0.1％牛血清白蛋白浓度的线性范围内，该视网膜/脉络膜样品，并使用这些用于测定。
划分在板上的试样成等分试样以100μl/孔。在4℃孵育过夜，然后用200微升0洗涤液的三次洗涤板。05％吐温20在1×PBS中。
注：抗VEGF存在于样品充当用于ELISA的一次抗体;因此，额外使用一个初级抗体是没有必要的。
稀释二级抗体，以1：1×PBS中20,000在0.1％BSA中，并加入100微升每孔的稀释的溶液。在4℃下用稀释的第二抗体温育该板过夜后，测量在450nm波长的光密度。减去平均每个标准和样品重复读数的平均值为零的标准光密度。
通过使用能够生成四参数逻辑（4-PL）曲线拟合，如SOFTMAX临的计算机软件减少数据创建基于从已知浓度的药物溶液的相对光信号的标准曲线。 [拟合] - 用于创建标准曲线，4-PL曲线拟合可以通过在[标准曲线]点击[4-参数]来获得。
计算出样品fr处的药物浓度嗡标准曲线。
注：检测限（LOD）的抗VEGF药物的局限性在我们的实验进行了研究。贝伐单抗的最低检测限为0.024-3.125纳克/毫升，并且aflibercept的是0.039-10纳克/毫升。

4.药代动力学分析方法

注：对于PK分析，可以使用任一隔室或者非房室分析。在房室分析，分子的处置行为可以通过公式（模型）进行说明。因此，隔室PK分析可以在任何时间t预测的浓度，而非房室模型不能想像或预测浓度 - 时间曲线为其他给药方案。然而，房室模型拟合可能是一个复杂而漫长的过程。与此相反，假设在非房室模型的限制较少。的非房室方法简单，通常用于计算药代动力学参数如半寿期，清除率和分布容积。我们选择房室模型上的抗VEGF药物药代动力学研究。

分析使用建模软件，如凤凰城的WinNonlin软件房室模型的药物浓度数据。
1. 单击[WNL5经典造型] [PK模式]并映射观察时间，给药量和药物浓度[设置]菜单内
2. 在[模型选择]标签室模型（例如，车厢号），并单击[执行]按钮来计算模型参数。
在分析后，选择最能描述基于以下标准的药物浓度数据的最终室模型：（例如，标准误差）（1）赤池信息准则，（2）参数估计的精度，以及（3）图形分析（例如，拟合曲线的善良）。
计算感兴趣的药代动力学参数，例如半衰期（T _1/2）和区域的时concentra下化曲线（AUC），从由隔室模型驱动的模型参数和方程。

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Representative Results

用来进行的兔眼用无菌技术感兴趣的药物的玻璃体内注射的过程示于 图1。 将处理过的眼睛在预定的时间去核并储存在-80℃。对于分析，三个室，房水，玻璃体和视网膜/脉络膜，从冷冻兔眼分离，如在 图2中 表现出来。所述隔室的样品用于ELISA制备。与第二抗体温育后，光密度在96孔板，其中包含了玻璃体内注射后收集在多个时间点是从三个隔为标准曲线兴趣和样品药物的已知浓度测定（ 图3）。 是从标准曲线（补充 图1） 计算出的浓度数据可以装配到pharmacokine抽动模型和药物动力学参数可从拟合线（ 图4） 来确定。在 图4中 ，药动学玻璃体内在注射贝伐单抗vitrectomized和非vitrectomized眼进行评价和比较。进行房室PK分析，它提供了以下等式来解释的PK特性。

C（T）= C ₁ EXP（ - K ₁ T）+ _C'2 EXP（ - K ₂ T）

C（微克/毫升）：浓度在任何时间 t（小时）的

C _1，C _2： 分布和消除相的反外推截

K _1，K _2： 在第速率常数Ë分布和消除阶段

如在图4 中所示，根据拟合模型估计的浓度匹配很好的实际测量值。有在贝伐单抗和药代动力学参数玻璃体浓度如与无玻璃体之间半衰期无显著差异。该实验表明，玻璃体在贝伐单抗的分布和间隙的作用是微不足道的。

图 1： 步骤在兔眼麻醉下执行眼内药物的玻璃体内注射 通过施加5％碘伏滴和通过皮肤的准备，和感兴趣的药物的体内注射使用无菌技术，使用嵌合的注射器进行风趣哈为30G针头。请点击此处查看该图的放大版本。

图 2： 该冷冻兔眼球成三个室分离 之后用外科刀片和除去虹膜巩膜切口，房水和玻璃可以分开。随后，视网膜/脉络膜可以小心地从巩膜，这是眼球的白色外层剥离。请点击此处查看该图的放大版本。

图3： 酶联免疫 的眼内药物在样品代表的三个室的吸附剂吸附测定（ELISA）。该图显示了一个96孔板，其用于免疫测定。与第二抗体温育后，颜色变化是在孔中指出。颜色的光密度取决于感兴趣的药物浓度。请点击此处查看该图的放大版本。

图 4： 拟合观测资料的药物动力学模型 在本实验中进行比较贝伐单抗的药物动力学在vitrectomized和非vitrectomized眼睛，贝伐单抗的实际玻璃体内浓度呈现为点。由药物动力学驱动的浓度数据的拟合曲线模型，该模型是由两个线表示，绘制并用于药代动力学参数，如药物的半衰期的计算。误差线表示95％的置信区间。请点击此处查看该图的放大版本。

补充图1：用于贝伐单抗检测的ELISA标准曲线 这是使用能产生四参数逻辑曲线拟合的软件获得。请点击此处下载此文件。

种类	玻璃	房水	参考 ENCE
老鼠	5.3微升	4.4微升	22
鼠	50-55微升	13.6微升	22,24
兔子	1.15-1.7毫升	350微升	23，27，28
猴	3.0-4.0毫升	102微升	23，26，28
人的	3.0-5.0毫升	144 - 247微升	23，20，21，28

表1：不同物种 ^17,22-30 玻璃体和房水的体积 。

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Materials

Company Catalog Number Comments Zoletil Virbac Laboratories, Carros Cedex, France

References

Urtti, A. Challenges and obstacles of ocular pharmacokinetics and drug delivery. Adv Drug Deliv Rev . 58 , 1131-1135 (2006).
Geroski, D. H., Edelhauser, H. F. Drug delivery for posterior segment eye disease. Invest Ophthalmol Vis Sci . 41 , 961-964 (2000).
Ghate, D., Edelhauser, H. F. Ocular drug delivery. Expert Opin Drug Deliv . 3 , 275-287 (2006).
Del Amo, M. E., Urtti, A. Current and future ophthalmic drug delivery systems. A shift to the posterior segment. Drug Discov Today . 13 , 135-143 (2008).
Avery, R. L., et al. Intravitreal injection technique and monitoring: updated guidelines of an expert panel. Retina . 34 , Suppl 12. S1-S18 (2014).
Kim, Y. C., Chiang, B., Wu, X., Prausnitz, M. R. Ocular delivery of macromolecules. J Control Release . 190 , 172-181 (2014).
Group, C. R., et al. Ranibizumab and bevacizumab for neovascular age-related macular degeneration. N Engl J Med . 364 , 1897-1908 (2011).
Campochiaro, P. A., et al. Sustained benefits from ranibizumab for macular edema following central retinal vein occlusion: twelve-month outcomes of a phase III study. Ophthalmology . 118 , 2041-2049 (2011).
Brown, D. M., et al. Ranibizumab for macular edema following central retinal vein occlusion: six-month primary end point results of a phase III study. Ophthalmology . 117 , 1124-1133 (2010).
Diabetic Retinopathy Clinical Research Network. Aflibercept, bevacizumab, or ranibizumab for diabetic macular edema. N Engl J Med . 372 , 1193-1203 (2015).
McCannel, C. A. Meta-analysis of endophthalmitis after intravitreal injection of anti-vascular endothelial growth factor agents: causative organisms and possible prevention strategies. Retina . 31 , 654-661 (2011).
Meyer, C. H., et al. Incidence of rhegmatogenous retinal detachments after intravitreal antivascular endothelial factor injections. Acta Ophthalmol . 89 , 70-75 (2011).
Del Amo, E. M., Urtti, A. Rabbit as an animal model for intravitreal pharmacokinetics: Clinical predictability and quality of the published data. Exp Eye Res . 137 , 111-124 (2015).
Hughes, P. M., Krishnamoorthy, R., Mitra, A. K. Vitreous disposition of two acycloguanosine antivirals in the albino and pigmented rabbit models: a novel ocular microdialysis technique. J Ocul Pharmacol Ther . 12 , 209-224 (1996).
Ahn, J., et al. Pharmacokinetics of Intravitreally Injected Bevacizumab in Vitrectomized Eyes. J Ocul Pharmacol Ther . , (2013).
Park, S. J., et al. Intraocular pharmacokinetics of intravitreal vascular endothelial growth factor-Trap in a rabbit model. Eye (Lond) . 29 , 561-568 (2015).
Jager, R. D., Aiello, L. P., Patel, S. C., Cunningham, E. T. Risks of intravitreous injection: a comprehensive review. Retina . 24 , 676-698 (2004).
Durairaj, C., Shah, J. C., Senapati, S., Kompella, U. B. Prediction of vitreal half-life based on drug physicochemical properties: quantitative structure-pharmacokinetic relationships (QSPKR). Pharm Res . 26 , 1236-1260 (2009).
Ahn, S. J., et al. Intraocular pharmacokinetics of ranibizumab in vitrectomized versus nonvitrectomized eyes. Invest Ophthalmol Vis Sci . 55 , 567-573 (2014).
Mochizuki, K., et al. Intraocular kinetics of ceftazidime (Modacin). Ophthalmic Res . 24 , 150-154 (1992).
Bakri, S. J., et al. Pharmacokinetics of intravitreal ranibizumab (Lucentis). Ophthalmology . 114 , 2179-2182 (2007).
Kondo, T., Miura, M., Imamichi, M. Measurement method of the anterior chamber volume by image analysis. Br J Ophthalmol . 70 , 668-672 (1986).
Toris, C. B., Yablonski, M. E., Wang, Y. L., Camras, C. B. Aqueous humor dynamics in the aging human eye. Am J Ophthalmol . 127 , 407-412 (1999).
Remtulla, S., Hallett, P. E. A schematic eye for the mouse, and comparisons with the rat. Vision Res . 25 , 21-31 (1985).
Barza, M. Animal models in evaluation of chemotherapy of ocular infections. Experimental Models in Antimicrobial Chemotherapy . Zak, O., Sande, M. A. , Harcourt Brace Jovanovich. 187-211 (1986).
Hughes, A. A schematic eye for the rat. Vision Res . 19 , 569-588 (1979).
Maurice, D. M., Mishima, S. Ocular pharmacokinetics . 69 , Springer Verlag. (1984).
Greenbaum, S., Lee, P. Y., Howard-Williams, J., Podos, S. M. The optically determined corneal and anterior chamber volumes of the cynomolgus monkey. Curr Eye Res . 4 , 187-190 (1985).
Ruby, A. J., Williams, G. A., Blumenkranz, M. S. Vitreous humor. Foundations of Clinical Ophthalmology . , Lippincott Williams & Wilkins. (2006).
Jaffe, G. J., Ashton, P., Andrew, P. Intraocular Drug Delivery . , Taylor & Francis. (2006).
Iyer, M. N., et al. Clearance of intravitreal moxifloxacin. Invest Ophthalmol Vis Sci . 47 , 317-319 (2006).
Fauser, S., et al. Pharmacokinetics and safety of intravitreally delivered etanercept. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol . 242 , 582-586 (2004).
Scholes, G. N., O'Brien, W. J., Abrams, G. W., Kubicek, M. F. Clearance of triamcinolone from vitreous. Arch Ophthalmol . 103 , 1567-1569 (1985).
Stastna, M., Behrens, A., McDonnell, P. J., Van Eyk, J. E. Analysis of protein composition of rabbit aqueous humor following two different cataract surgery incision procedures using 2-DE and LC-MS/MS. Proteome Sci . 9 , 8 (2011).
Sinapis, C. I., et al. Pharmacokinetics of intravitreal bevacizumab (Avastin(R)) in rabbits. Clin Ophthalmol . 5 , 697-704 (2011).
Gaudreault, J., Fei, D., Rusit, J., Suboc, P., Shiu, V. Preclinical pharmacokinetics of Ranibizumab (rhuFabV2) after a single intravitreal administration. Invest Ophthalmol Vis Sci . 46 , 726-733 (2005).
Maurice, D. Review: practical issues in intravitreal drug delivery. J Ocul Pharmacol Ther . 17 , 393-401 (2001).
Laude, A., et al. Intravitreal therapy for neovascular age-related macular degeneration and inter-individual variations in vitreous pharmacokinetics. Prog Retin Eye Res . 29 , 466-475 (2010).
Christoforidis, J. B., Carlton, M. M., Knopp, M. V., Hinkle, G. H. PET/CT imaging of I-124-radiolabeled bevacizumab and ranibizumab after intravitreal injection in a rabbit model. Invest Ophthalmol Vis Sci . 52 , 5899-5903 (2011).
Sangwan, V. S., Pearson, P. A., Paul, H., Comstock, T. L. Use of the Fluocinolone Acetonide Intravitreal Implant for the Treatment of Noninfectious Posterior Uveitis: 3-Year Results of a Randomized Clinical Trial in a Predominantly Asian Population. Ophthalmol Ther . 4 , 1-19 (2015).
Bajwa, A., Aziz, K., Foster, C. S. Safety and efficacy of fluocinolone acetonide intravitreal implant (0.59 mg) in birdshot retinochoroidopathy. Retina . 34 , 2259-2268 (2014).
Sanford, M. Fluocinolone acetonide intravitreal implant (Iluvien(R)): in diabetic macular oedema. Drugs . 73 , 187-193 (2013).
Haller, J. A., et al. Dexamethasone intravitreal implant in patients with macular edema related to branch or central retinal vein occlusion twelve-month study results. Ophthalmology . 118 , 2453-2460 (2011).
Boyer, D. S., et al. Three-year, randomized, sham-controlled trial of dexamethasone intravitreal implant in patients with diabetic macular edema. Ophthalmology . 121 , 1904-1914 (2014).
Patel, S. R., et al. Targeted administration into the suprachoroidal space using a microneedle for drug delivery to the posterior segment of the eye. Invest Ophthalmol Vis Sci . 53 , 4433-4441 (2012).
Makadia, H. K., Siegel, S. J. Poly Lactic-co-Glycolic Acid (PLGA) as Biodegradable Controlled Drug Delivery Carrier. Polymers (Basel) . 3 , 1377-1397 (2011).

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