单核苷酸多态性微阵列分析对智力障碍和发育迟缓的遗传学诊断价值

Application of single nucleotide polymorphism microarray in clinical diagnosis of intellectual disability or retardation

Junjie HU , ^{Yeqing QIAN

,
^{Yixi SUN

,
^{Jialing YU

,
^{Yuqin LUO

,
^{and

Minyue DONG

^{^*}}}}}}

Junjie HU

浙江大学医学院附属妇产科医院生殖遗传科生殖遗传教育部重点实验室, 浙江杭州 310006

Find articles by Junjie HU

Yeqing QIAN

浙江大学医学院附属妇产科医院生殖遗传科生殖遗传教育部重点实验室, 浙江杭州 310006

Find articles by Yeqing QIAN

Yixi SUN

浙江大学医学院附属妇产科医院生殖遗传科生殖遗传教育部重点实验室, 浙江杭州 310006

Find articles by Yixi SUN

Jialing YU

浙江大学医学院附属妇产科医院生殖遗传科生殖遗传教育部重点实验室, 浙江杭州 310006

Find articles by Jialing YU

Yuqin LUO

浙江大学医学院附属妇产科医院生殖遗传科生殖遗传教育部重点实验室, 浙江杭州 310006

Find articles by Yuqin LUO

Minyue DONG

浙江大学医学院附属妇产科医院生殖遗传科生殖遗传教育部重点实验室, 浙江杭州 310006 浙江大学医学院附属妇产科医院生殖遗传科生殖遗传教育部重点实验室, 浙江杭州 310006

董旻岳(1964—), 男, 博士, 主任医师, 博士生导师, 主要从事生殖遗传学研究; E-mail: nc.ude.ujz@ymgnod ; https://orcid.org/0000-0002-4344-7924 nc.ude.ujz@eijnujuh https://orcid.org/0000-0002-7523-6101 第一作者：胡珺洁(1986—), 女, 硕士, 主管技师, 主要从事医学遗传学研究; E-mail: ; 。明确病因对于ID/DD的早期干预、预后判断、产前诊断及遗传咨询均有重要意义。传统的染色体核型分析是最常用和基本的检测染色体基因组异常的方法，但由于分辨率的限制，其仅能检测出染色体数目异常或大于5~10 Mb的缺失/重复等染色体异常，不能识别更小的结构突变。随着分子遗传学技术的发展和临床应用的推广，单核苷酸多态性微阵列(single nucleotide polymorphism microarray, SNP array)分析在ID/DD等疾病诊断中的应用越来越广泛。本研究以145例ID/DD患者为研究对象，探讨SNP array在ID/DD病因学诊断中的价值。

1 对象与方法

1.1 对象

2013年1月至2018年6月就诊于浙江大学医学院附属妇产科医院以ID/DD为主诉的患者共145例，其中男性82例，女性63例，就诊年龄4个月~40岁。

本研究方案经浙江大学医学院附属妇产科医院伦理委员会审批通过，患者本人或其监护人签署知情同意书。

1.2 试剂和仪器

QIAamp DNA Blood Mini Kit为德国QIAGEN公司产品；NanoDrop 2000分光光度计为美国Thermo Fisher Scientific公司产品；Affymetrix CytoScan ^TM HD Array相关试剂、GeneChip ^TM Hybri-dization Oven 645(杂交炉)、GeneChip ^TM Fluidics Station 450Dx(洗涤工作站)、GeneChip ^TM Scanner GCS 3000 Dx(高分辨芯片扫描仪)为美国Affymetrix公司产品。

1.3 样本收集和DNA抽提

采集患者外周血样本1~2 mL。用QIAamp DNA Blood Mini Kit提取外周血基因组DNA，抽提DNA置于-20 ℃冰箱保存。芯片检测前使用分光光度计定量，标准化稀释样本浓度值至50 ng/L。

1.4 SNP array检测突变基因及数据分析

本研究中使用了Affymetrix CytoScan ^TM HD芯片，涵盖750 000 SNP探针和1 900 000拷贝数变异(CNV)探针。芯片检测所需患者DNA样本为250 ng。参照Affymetrix公司提供的标准化流程检测(基因组DNA经过消化、连接、PCR扩增、纯化、定量、片段化、标记、杂交、洗脱，染色和扫描)；得到原始数据后经AGCC(Affymetrix GeneChip Convert Console)软件进行图像显示分析，再通过CHAS(Chromosome Analysis Suite)软件将原始cel文件转换为可分析的cychp文件；质控合格数据利用CHAS软件进行后续的CNV结果判读。Affymetrix CytoScan ^TM HD芯片报告标准为缺失片段大于200 kb、重复片段大于500 kb、杂合性缺失大于10 Mb的染色体CNV为异常。结果判读查询人类染色体不平衡和表型数据库(DECIPHER， https://decipher.sanger.ac.uk/ )、PubMed( https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed )、ClinGen( https://www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/dbvar/clingen/index.shtml )、在线人类孟德尔遗传数据库(OMIM， https://www.omim.org )和基因组变异数据库(DGV，)等，报告已报道明确致病的微重复/微缺失综合征区段；并通过比对健康人染色体拷贝数DGV数据库来排除拷贝数多态性，判断过程参照图 1 。每例患者CNV的性质根据美国医学遗传学与基因组学学会(ACMG)指南最终分成5类：①致病性的CNV; ②可能致病的CNV；③可能良性的CNV；④临床意义未明的CNV；⑤良性的CNV。

An external file that holds a picture, illustration, etc. Object name is zjdxxbyxb-48-4-420-1.jpg

Open in a separate window

图1

单核苷酸多态性微阵列检测结果判读过程

OMIM:在线人类孟德尔遗传数据库; DECIPHER:人类染色体不平衡和表型数据库; DGV:基因组变异.

2 结果

145例ID/DD患者中，存在致病性CNV 26例( 表 1 )，其结果判读主要依据CNV片段长度、是否完全位于已知的致病综合征区域、ClinGen评分、关键基因的功能丧失不容忍(probability of loss-of-function intolerance, pLI)指数等；存在可能致病CNV 6例( 表 2 )，主要依据PubMed数据库的参考文献、是否与已知致病区域大部分重叠等；存在临床意义未明CNV 18例( 表 3 )；存在可能良性CNV 14例( 表 4 )，主要依据检出CNV是否遗传自父母、是否与本地正常人群外周血数据库相重叠等进行判读；未见明显异常81例(包含良性CNV)。表1 26例检出致病性拷贝数变异患者的一般资料和检测结果 Table 1 Clinical data and single nucleotide polymorphism microarray results of 26 patients with pathogenic copy number variations

检测结果arr[hg19]

片段长度(kb)

结果判读及依据

ClinGen评分

pLI指数

DD、足月小样儿

1p36.33p36.31(849 466~6 927 948)×1

CAMTA1 ( 611501 ) ^AD ，位于1p36微缺失综合征

ID、本人面部畸形，前胎先天性心脏病

1p36.32p36.23(5 278 785~8 507 731)×1

CAMTA1 ( 611501 ) ^AD ，位于1p36微缺失综合征

ID/DD

2p25.3p24.3(12 770~15 590 659)×3

15 578

致病性，>10 Mb

15q26.3(100 597 165~102 429 112)×1

临床意义未明，位于15q26增生综合征

2p25.3p24.3(12 770~15 590 659)×3

15 578

致病性，>10 Mb

15q26.3(100 597 165~102 429 112)×1

临床意义未明，位于15q26增生综合征

ID、出生时脸部有赘生物，手精细运动不灵活

3p26.3p25.3(61 891~9 706 654)×1

SETD5 ( 615743 )

7q36.1(149 552 532~150 150 057)×3

临床意义未明

ID/DD、面部畸形

4q28.3q31.21(133 624 276~143 279 820)×1

NAA15 ( 608000 )

0.999

ID/DD、唇腭裂

4q31.3q34.1(154 700 857~174 858 619)×1

20 158

致病性，>10 Mb

DD、五官畸形

4q34.1q35.2(175 368 718~190 957 473)×1

15 589

致病性，>10 Mb

5q15q23.1(96 373 240~118 982 484)×2 hmz

22 609

杂合性缺失

ID、肾脏疾病等

7q11.23(72 834 405~74 141 493)×1

致病性，Williams-Beuren综合征

ID/DD

6p23p22.3(14 041 412~15 283 501)×3

临床意义未明

7q36.2q36.3(153 231 421~159 119 707)×1

DPP6 ( 612956 )

0.968

DD、先天性心脏病

8p23.1(8 093 065~11 881 742)×3

致病性，8p23.1重复综合征

22q11.21(18 916 827~21 464 763)×1

致病性，22q11.2缺失综合征

ID、母亲为平衡易位携带者，46XXt(9;14)(q22;p12)

9p24.3(203 861~86 366 350)×3

86 162

致病性，>10 Mb

ID、IQ 50+

10q22.3q23.2(81 457 752~89 027 024)×1

致病性，10q22-q23缺失综合征

ID、先天性失明

11p14.1p12(30 808 717~39 258 015)×1

致病性，WAGR 11p13缺失综合征

ID、脑白质发育不良

7p22.2(3 703 104~4 241 241)×1

临床意义未明

11q23.3q24.3(119 106 833~129 224 378)×1

10 118

致病性，>10 Mb

12p13.33p13.32(296 244~5 013 540)×1

致病性，12p13.33微缺失综合征

DD 47XY+mar[66.7%]/46XY[33.3%]

13q11q13.3(19 436 286~38 290 901)×2~3

18 854

致病性，>10 Mb

14q11.2q12(20 511 672~31 130 390)×2~3

10 619

致病性，>10 Mb

DD、脑发育不良、癫痫

15q11.2q13.1(23 620 191~28 534 359)×1

致病性，Prader-Willi/Angelman综合征

ID、不会讲话、47XY+mar

Yq11.223q11.23(24 988 143~28 423 925)×215q11.2q13.1(22 770 421~28 644 578)×4

34355874

可能良性致病性，Prader-Willi/Angelman综合征

DD，不会说话不会走，听力降低

16p13.3(85 880~1 028 246)×1

致病性，红细胞异常-智力障碍综合征

16p13.3p13.13(1 066 252~11 249 660)×3

10 183

致病性，>10 Mb

ID，尿道下裂，先心室间隔缺失，听力异常

9p24.3p24.1(203 861~7 738 229)×1

16q23.1q24.3(76 494 902~90 155 062)×3

13 660

致病性，>10 Mb

14q31.3(88 056 554~88 641 038)×3

临床意义未明

17p12p11.1(14 078 263~22 227 062)×3

致病性，Charcot-Marie-Tooth综合征1A型17p11.2重复综合征

1A型17p11.2重复综合征

18p11.32p11.21(136 226~14 363 631)×3

14 227

致病性，>10 Mb

21q11.2(15 006 457~15 833 827)×3

临床意义未明

ID，伴糖尿病

22q11.21q11.22(21 465 661~22 962 196)×1

致病性，22q11.2远端缺失综合征

ID/DD，大伯一女儿口齿不清，多动症，智商低

Xq22.1q22.2(102 465 091~103 577 991)×2

致病性，佩梅病， PLP1 ( 300401 )

0.903

Open in a separate window

“—”：无相关数据.ID：智力障碍；DD：发育迟缓；IQ:智商指数；AD：常染色体显性遗传；XLR：X连锁隐性遗传；PLI:功能丧失不容忍指数.

表2 6例检出可能致病拷贝数变异患者的一般资料和检测结果 Table 2 Clinical data and single nucleotide polymorphism microarray results of 6 patients with likely pathogenic copy number variations

检测结果arr[hg19]

片段长度(kb)

结果判读及依据

1q41q42.13(223 269 645~228 173 392)×1

可能致病，PMID:271840082435707625900767

7p14.1p12.3(38 877 764~46 362 179)×1

可能致病，PMID:1650914，CDK13(603309)

8p23.3p23.1(158 048~9 647 023)×1

可能致病，与8p23.1缺失综合征大部分重叠

17p13.2p13.3(2 582 247~3 412 325)×3

可能致病，PMID:1913695021595003，位于Miller-Dieker综合征区域

4p15.33(11 778 523~12 875 904)×3 17q12(34 822 465~36 307 773)×1

10971485

可能良性，4p15.33遗传自父亲可能致病，快速循环型情感障碍综合征 HNF1B ( 189907 )

ID/DD、癫痫、步态不稳

18p11.32p11.31(136 226~6 149 134)×1 18q23(75 302 204~78 014 123)×3

60132712

可能致病，PMID:26278570， TGIF1 ( 602630 ) ^AD 临床意义未明

Open in a separate window

ID：智力障碍；DD：发育迟缓；PIMD：PubMed唯一标识码；AD：常染色体显性遗传.

表3 18例检出临床意义未明拷贝数变异患者的一般资料和检测结果 Table 3 Clinical data and single nucleotide polymorphism microarray results of 18 patients with uncertain clinical significance copy number variations

年龄(岁)

检测结果arr[hg19]

片段长度(kb)

结果判读及依据

1q21.1(145 617 348~145 888 926)×1

临床意义未明

本人与弟弟均是ID

1q31.1(189 320 335~189 537 683)×1 8q22.2(100 273 863~100 564 876)×1

可能良性，DGV6临床意义未明，DGV1， VPS13B ( 607817 )

ID，出生时有窒息史、出生体质量2.4 kg，走路不稳

3p24.1p22.3(30 566 655~36 027 917)×1

临床意义未明

6q15q16.1(91 572 709~94 390 667)×1

临床意义未明

ID，IQ 60+，自闭症

6q22.1(116 977 968~117 609 892)×3

临床意义未明

6q27(167 595 151~168 224 287)×3

临床意义未明

7q21.11(82 712 935~83 043 602)×3

临床意义未明

ID，头颅增大

9p23(11 734 432~12 074 149)×1

临床意义未明

ID，IQ 50

11q14.1q14.3(80 257 567~88 934 583)×1

临床意义未明

ID，IQ 60，先天性心脏病，染色体正常

12p13.33p13.31(173 786~6 417 126)×3 17q25.3(76 102 160~80 396 283)×317q25.3(80 396 463~81 041 938)×1

62434294645

临床意义未明临床意义未明临床意义未明

ID，月经不调，外伤后出现“脑水肿”

12q15q21.1(70 339 049~75 264 408)×1

临床意义未明

15q11.2(22 770 421~23 290 819)×3/DGV

临床意义未明

ID，月经失调，祖父母近亲结婚

16q23.1(76 425 154~77 171 390)×3

临床意义未明

21q11.2(15 006 457~15 713 941)×3

临床意义未明

ID，先天无脑回，祖父母近亲结婚，姑妈为聋哑患者

Xp11.3(44 298 687~44 947 473)×3 Xp11.23p11.22(49 174 228~50 026 412)×3

64852

临床意义未明临床意义未明

ID，脑积水，视网膜病变

Xp22.33(1 024 439~1 844 417)×1Xq13.1(68 051 752~68 894 767)×2

820843

临床意义未明临床意义未明

ID，面容呆滞

Xq12(65 377 222~66 451 783)×2

临床意义未明

Xq25(123 508 622~124 030 958)×26q26(163 008 514~163 259 223)×1

522251

临床意义未明临床意义未明

Open in a separate window

ID：智力障碍；DD：发育迟缓；IQ:智商指数；DGV No.：基因组变异数据库记录例数；AR：常染色体隐性遗传.

表4 14例检出可能良性拷贝数变异患者的一般资料和检测结果 Table 4 Clinical data and single nucleotide polymorphism microarray results of 14 patients with likely benign copy number variations

年龄(岁)

检测结果arr[hg19]

片段长度(kb)

结果判读及依据

本人和女儿均为ID

1p21.1(106 034 937~106 269 061)×1

可能良性，DGV1，不包含OMIM基因

ID/DD，IQ 64

1q31.1(188 704 364~189 128 944)×1

可能良性，本地数据库多例正常人群外周血记录

ID，法洛四联症、马蹄肾、面谱人

2q21.1(131 477 947~131 984 527)×1/DGV6例

可能良性，DGV6

ID，IQ＜40

4q35.2(187 922 671~188 948 985)×3

可能良性，DGV2，本地数据库多例正常人外周血记录

5p12p11(45 676 469~46 389 339)×3

可能良性，遗传自正常表型母亲

6q26(162 358 261~162 612 365)×/DGV4例

可能良性，DGV4

ID，至今不会说话，MR提示两侧顶叶皮层及右侧基底节异常信号，脑回大，脑沟少，考虑先天性发育不全，巨脑回可能。患者有一舅舅，存在类似症状，但程度较轻

9p21.3(21 448 447~21 693 490)×1

可能良性，遗传自正常表型父亲

10p15.3(1 342 958~1 868 636)×3 17p11.2p11.1(21 552 185~22 261 792)×3

526710

可能良性，DGV2，表型正常的弟弟有一致区段可能良性，DGV2

ID，特殊面容

16p11.2(28 689 085~29 051 191)×1

可能良性，遗传自正常表型父亲

DD，精神发育迟滞，染色体正常

Xp22.32p22.31(5 970 504~6 075 215)×3

可能良性，遗传自正常表型父亲

ID，运动发育迟缓

Xp22.33(565 815~1 223 445)×1

可能良性，遗传自正常表型母亲，弟弟芯片结果一致

ID，自闭症

Xq13.1(68 954 896~69 552 681)×3

可能良性，遗传自正常表型母亲

ID，听力障碍

Xq28(154 941 868~155 233 731)×1

可能良性，遗传自正常表型父亲

Xq28(148 731 893~149 549 959)×2

可能良性，遗传自正常表型母亲

Open in a separate window

ID：智力障碍；DD：发育迟缓；IQ:智商指数；DGV No.：基因组变异数据库记录例数；OMIM:在线人类孟德尔遗传数据库.

3 讨论

在ID/DD患者中，遗传因素约占40%，其中染色体异常和单基因病分别占25%和10%。SNP array是一种针对全基因组范围内拷贝数改变的检测技术，能识别染色体非整倍体，也能检测出传统细胞遗传学方法不能识别的小片段缺失或重复畸变，定位具体位置。该技术可以解释近20%的智力低下病因，已于2010年被美国医学遗传学协会推荐作为一线检测手段应用于智力低下和生长发育迟缓的患者

本研究利用SNP array技术对145例患者的样本进行分析，共检测出明确致病染色体拷贝数变异26例，致病可能性较高的CNV 6例，涉及1~4、7~18、22号染色体以及X染色体，染色体发生异常最多的是1、4、7和17号染色体，均有3例患者，检出率为22.1%，略高于2009年Hochstenbach等报道的19%，可能与数据库、文献的实时更新致使更多的智力障碍相关基因及综合征被认知有关。

26例检出致病性CNV的患者中，存在新发的缺失/重复区段大于10 Mb患者11例，完全覆盖综合征区域患者10例，涉及11种综合征；缺失/重复区段包含呈常染色体显性遗传的智力障碍相关基因患者6例。本研究发现患者3和患者4缺失重复CNV基本一致，就诊时间分别为2013年、2018年，经随访得知，两例患者为表姐妹，患者4母亲与患者3父亲为姐弟关系，均为平衡易位携带者。患者1、2、5、6、10的缺失区域包含 CAMTA1 ( 611501 )、 SETD5 ( 615743 )、 NAA15 ( 608000 )、 DPP6 ( 612956 )四种基因，分别可引起非进展性小脑性共济失调伴智力障碍、智力障碍23亚型、智力障碍50亚型、智力障碍33亚型等疾病，均呈常染色体显性遗传，ClinGen数据库的基因单倍剂量评分分别为3、3、2、3分，对应的pLI指数为1.0、1.0、0.999、0.968，与患者临床表型相符，致病证据充足，故将上述CNV判定为致病性。另有多篇文献报道患者5的缺失区段可导致智力障碍。患者26，X染色体重复区段包含佩梅病的致病基因 PLP1 ( 300401 )，ClinGen数据库的基因三倍剂量评分为3分，pLI指数为0.903，致病证据充足，将该CNV判定为致病性。佩梅病患者智力受损及运动能力发育迟缓，与患者26表型相符。患者9、11、13、14、16、19、20、21、23、25所涉及的综合征区域均与ID/DD表型相关，除患者13与患者16外，其余患者所覆盖的综合征临床表型在DECIPHER数据库均有详细描述。患者13缺失区段覆盖10q22~q23缺失综合征，该综合征的主要致病基因为 NRG3 、 GR1D1 及相邻基因，其主要临床表现为DD，神经、精神异常。Thevenon等报道12p13.33微缺失综合征与智力低下表型相关，与患者16表型相符。

6例存在可能致病性CNV的患者中，患者27缺失区域包含 FBXO28 ( 609100 )基因，多篇文献报道该基因的缺失会导致发育迟缓、语言障碍和癫痫，与患者表型相符。患者28缺失区域包含 CDK13 ( 603309 )、 GLI3 ( 165240 )基因， CDK13 基因与先天性心脏缺陷、面部畸形和智力发育障碍相关，呈常染色体显性遗传，pLI指数为0.751； GLI3 ( 165240 )缺失可导致Greig端部多发性并指综合征(GCPS)。GCPS是一种影响人类肢体和颅面部发育的常染色体显性疾病，受累者通常表现出手轴后多指、脚轴前多指、大头畸形和前额突出等，多数患者智力正常，少数患者有轻微智力障碍，呈常染色体显性遗传。患者29的8号染色体短臂末端缺失约9.489 Mb，位于8p23.1缺失综合征区域，DECIPHER数据库中有多条临床表型为智力障碍且评级为致病性/可能致病的CNV缺失记录小于本患者的缺失区域。患者30重复区域位于Miller-Dieker综合征区域，包含 PAFAH1B1 ( 601545 )基因，Bi等和Avela等报道该基因重复与ID/DD相关。患者31缺失区域包含RACD综合征区域，其关键致病基因 HNF1B ( 189907 )呈常染色体显性遗传，DECIPHER数据库提示该基因为DDG2P(Developmental Disorders Genotype-to-Phenotype Database)记录的发育障碍基因，同时数据库中有多条临床表型为智力障碍且评级为致病性/可能致病的CNV缺失记录小于本患者的缺失区域。Verrotti等报道一例18p11.32p11.31缺失的整体发育迟缓、癫痫患儿，同时还指出 TGIF1 ( 602630 )突变可导致轻度智力障碍，并不总是与前脑无裂畸形相关，它可能与癫痫的发生有关，提示 TGIF1 基因不完全外显和可变表达的特点，与患者32表型基本一致。基于上述依据，提示这6例CNV可能致病，评级为可能致病。

在18例评级为临床意义未明的CNV中，我们发现患者34的缺失区段包含 VPS13B ( 607817 )基因，呈常染色体隐性遗传，该基因是科恩综合征的关键致病基因，表现为ID、肥胖等表型，家族史中弟弟也有相似表型，不排除该等位基因存在基因突变可能，可行基因测序确证病因。其余17例患者因没有明确致病证据，评级为临床意义未明。14例评级为可能良性的CNV，主要依据为：①是否遗传自父母；②DGV数据库记载的相同或更大的缺失/重复记录; ③是否涉及致病基因; ④是否与本地正常人群外周血记录相同等。但随着文献与数据库的实时更新，所有评级随时可能更换。

综上所述，利用SNP array技术检测ID/DD患者的染色体特定区域的CNV，对解释基因型和表型间的联系具有更加深刻的意义。值得注意的是，SNP array技术不能检测点突变，无法对点突变致病的患者进行准确检测，同时也可能检测出很多意义不明的CNV，需要结合丰富的临床经验以及多种数据库检索分析对其进行辨别。但SNP array技术也可提示可能致病的隐性基因区域，并进一步检测该基因，确定致病突变(如患者34)，其检测效率与分辨率明显高于传统的染色体核型分析，在ID/DD患者中具有较高的应用价值。

Funding Statement

浙江省重点研发计划（2019C03025）

References

1. 裴金瑞.靶向捕获二代测序检测不明原因智力障碍/发育迟缓结果分析[D].太原: 山西医科大学, 2015. http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10114-1015984903.htm .

2. 马娜, 胡浩, 贾政军, et al. 罕见的4q13.1-13.3微缺失导致患者智力低下及生长发育迟缓表型中国现代医学杂志 2016; 26 (23):140–142. doi: 10.3969/j.issn.1005-8982.2016.23.030.
[马娜, 胡浩, 贾政军, 等.罕见的4q13.1-13.3微缺失导致患者智力低下及生长发育迟缓表型[J].中国现代医学杂志, 2016, 26(23):140-142.] [ CrossRef ] [ Google Scholar ]

3. GRUCHY N, DECAMP M, RICHARD N, et al. Array CGH analysis in high-risk pregnancies:comparing DNA from cultured cells and cell-free fetal DNA. Prenat Diagn. 2012; 32 (4):383–388. doi: 10.1002/pd.2861.
[GRUCHY N, DECAMP M, RICHARD N, et al. Array CGH analysis in high-risk pregnancies:comparing DNA from cultured cells and cell-free fetal DNA[J]. Prenat Diagn, 2012, 32(4):383-388.] [ PubMed ] [ CrossRef ] [ Google Scholar ]

4. D'AMOURS G, KIBAR Z, MATHONNET G, et al. Whole-genome array CGH identifies pathogenic copy number variations in fetuses with major malformations and a normal karyotype. Clin Genet. 2012; 81 (2):128–141. doi: 10.1111/j.1399-0004.2011.01687.x.
[D'AMOURS G, KIBAR Z, MATHONNET G, et al. Whole-genome array CGH identifies pathogenic copy number variations in fetuses with major malformations and a normal karyotype[J]. Clin Genet, 2012, 81(2):128-141.] [ PubMed ] [ CrossRef ] [ Google Scholar ]

5. SHINAWI M, CHEUNG S W. The array CGH and its clinical applications. Drug Discov Today. 2008; 13 (17-18):760–770. doi: 10.1016/j.drudis.2008.06.007.
[SHINAWI M, CHEUNG S W. The array CGH and its clinical applications[J]. Drug Discov Today, 2008, 13(17-18):760-770.] [ PubMed ] [ CrossRef ] [ Google Scholar ]

6. HOCHSTENBACH R, VAN BINSBERGEN E, ENGELEN J, et al. Array analysis and karyotyping:workflow consequences based on a retrospective study of 36, 325 patients with idiopathic developmental delay in the Netherlands. http://cn.bing.com/academic/profile?id=c0accaa462811610a95498601d981ed9&encoded=0&v=paper_preview&mkt=zh-cn . Eur J Med Genet. 2009; 52 (4):161–169.
[HOCHSTENBACH R, VAN BINSBERGEN E, ENGELEN J, et al. Array analysis and karyotyping:workflow consequences based on a retrospective study of 36, 325 patients with idiopathic developmental delay in the Netherlands[J]. Eur J Med Genet, 2009, 52(4):161-169.] [ PubMed ] [ Google Scholar ]

7. MANNING M, HUDGINS L, Professional Practice and Guidelines Committee. Array-based technology and recommendations for utilization in medical genetics practice for detection of chromosomal abnormalities. Genet Med. 2010; 12 (11):742–745. doi: 10.1097/GIM.0b013e3181f8baad.
[MANNING M, HUDGINS L, Professional Practice and Guidelines Committee. Array-based technology and recommendations for utilization in medical genetics practice for detection of chromosomal abnormalities[J]. Genet Med, 2010, 12(11):742-745.] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ CrossRef ] [ Google Scholar ]

8. KALE T, PHILIP M. An interstitial deletion at 7q33-36.1 in a patient with intellectual disability, significant language delay, and severe microcephaly. http://cn.bing.com/academic/profile?id=ebc3dd95b1cbac3c85bb1167500e34c9&encoded=0&v=paper_preview&mkt=zh-cn . Case Rep Genet. 2016; 2016 :6046351.
[KALE T, PHILIP M. An interstitial deletion at 7q33-36.1 in a patient with intellectual disability, significant language delay, and severe microcephaly[J]. Case Rep Genet, 2016, 2016:6046351.] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ]

9. GUNNARSSON C, FOYN BRUUN C. Molecular characterization and clinical features of a patient with an interstitial deletion of 3p25.3-p26.1. Am J Med Genet A. 2010; 152A (12):3110–3114. doi: 10.1002/ajmg.a.33353.
[GUNNARSSON C, FOYN BRUUN C. Molecular characterization and clinical features of a patient with an interstitial deletion of 3p25.3-p26.1[J]. Am J Med Genet A, 2010, 152A(12):3110-3114.] [ PubMed ] [ CrossRef ] [ Google Scholar ]

10. KELLOGG G, SUM J, WALLERSTEIN R. Deletion of 3p25.3 in a patient with intellectual disability and dysmorphic features with further definition of a critical region. http://cn.bing.com/academic/profile?id=b189e45e74c95cb2d04e8136498deaa4&encoded=0&v=paper_preview&mkt=zh-cn . Am J Med Genet A. 2013; 161A (6):1405–1408.
[KELLOGG G, SUM J, WALLERSTEIN R. Deletion of 3p25.3 in a patient with intellectual disability and dysmorphic features with further definition of a critical region[J]. Am J Med Genet A, 2013, 161A(6):1405-1408.] [ PubMed ] [ Google Scholar ]

11. CARVALHO C M, BARTNIK M, PEHLIVAN D, et al. Evidence for disease penetrance relating to CNV size:Pelizaeus-Merzbacher disease and manifesting carriers with a familial 11 Mb duplication at Xq22. Clin Genet. 2012; 81 (6):532–541. doi: 10.1111/j.1399-0004.2011.01716.x.
[CARVALHO C M, BARTNIK M, PEHLIVAN D, et al. Evidence for disease penetrance relating to CNV size:Pelizaeus-Merzbacher disease and manifesting carriers with a familial 11 Mb duplication at Xq22[J]. Clin Genet, 2012, 81(6):532-541.] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ CrossRef ] [ Google Scholar ]

12. BALCIUNIENE J, FENG N, IYADURAI K, et al. Recurrent 10q22-q23 deletions:a genomic disorder on 10q associated with cognitive and behavioral abnormalities. Am J Hum Genet. 2007; 80 (5):938–947. doi: 10.1086/513607.
[BALCIUNIENE J, FENG N, IYADURAI K, et al. Recurrent 10q22-q23 deletions:a genomic disorder on 10q associated with cognitive and behavioral abnormalities[J]. Am J Hum Genet, 2007, 80(5):938-947.] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ CrossRef ] [ Google Scholar ]

13. THEVENON J, CALLIER P, ANDRIEUX J, et al. 12p13.33 microdeletion including ELKS/ERC1, a new locus associated with childhood apraxia of speech. http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=perio&id=fe42c6c45eed6b0e7a7ed8977606d236 . Eur J Hum Genet. 2013; 21 (1):82–88.
[THEVENON J, CALLIER P, ANDRIEUX J, et al. 12p13.33 microdeletion including ELKS/ERC1, a new locus associated with childhood apraxia of speech[J]. Eur J Hum Genet, 2013, 21(1):82-88.] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ]

14. PAPETTI L, SCHETTINI L, GARONE G, et al. The crucial role of FBXO28 in the pathogenesis of the 1q41q42 microdeletion syndrome. Am J Med Genet A. 2016; 170 (11):3041–3042. doi: 10.1002/ajmg.a.37753.
[PAPETTI L, SCHETTINI L, GARONE G, et al. The crucial role of FBXO28 in the pathogenesis of the 1q41q42 microdeletion syndrome[J]. Am J Med Genet A, 2016, 170(11):3041-3042.] [ PubMed ] [ CrossRef ] [ Google Scholar ]

15. AU P Y, ARGIROPOULOS B, PARBOOSINGHJ S, et al. Refinement of the critical region of 1q41q42 microdeletion syndrome identifies FBXO28 as a candidate causative gene for intellectual disability and seizures. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24357076 . Am J Med Genet A. 2014; 164A (2):441–448.
[AU P Y, ARGIROPOULOS B, PARBOOSINGHJ S, et al. Refinement of the critical region of 1q41q42 microdeletion syndrome identifies FBXO28 as a candidate causative gene for intellectual disability and seizures[J]. Am J Med Genet A, 2014, 164A(2):441-448.] [ PubMed ] [ Google Scholar ]

16. CASSINA M, RIGON C, CASARIN A, et al. FBXO28 is a critical gene of the 1q41q42 microdeletion syndrome. Am J Med Genet A. 2015; 167 (6):1418–1420. doi: 10.1002/ajmg.a.37033.
[CASSINA M, RIGON C, CASARIN A, et al. FBXO28 is a critical gene of the 1q41q42 microdeletion syndrome[J]. Am J Med Genet A, 2015, 167(6):1418-1420.] [ PubMed ] [ CrossRef ] [ Google Scholar ]

17. VORTKAMP A, GESSLER M, GRZESCHIK K H. GLI3 zinc-finger gene interrupted by translocations in Greig syndrome families. Nature. 1991; 352 (6335):539–540. doi: 10.1038/352539a0.
[VORTKAMP A, GESSLER M, GRZESCHIK K H. GLI3 zinc-finger gene interrupted by translocations in Greig syndrome families[J]. Nature, 1991, 352(6335):539-540.] [ PubMed ] [ CrossRef ] [ Google Scholar ]

18. BI W, SAPIR T, SHCHELOCHKOVO A, et al. Increased LIS1 expression affects human and mouse brain development. Nat Genet. 2009; 41 (2):168–177. doi: 10.1038/ng.302.
[BI W, SAPIR T, SHCHELOCHKOVO A, et al. Increased LIS1 expression affects human and mouse brain development[J]. Nat Genet, 2009, 41(2):168-177.] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ CrossRef ] [ Google Scholar ]

19. AVELA K, AKTAN-COLLAN K, HORELLI-KUITUNEN N, et al. A microduplication on chromosome 17p13.1p13.3 including the PAFAH1B1(LIS1) gene. http://cn.bing.com/academic/profile?id=12375db179a829a7fa872dc6993304fe&encoded=0&v=paper_preview&mkt=zh-cn . Am J Med Genet A. 2011; 155A (4):875–879.
[AVELA K, AKTAN-COLLAN K, HORELLI-KUITUNEN N, et al. A microduplication on chromosome 17p13.1p13.3 including the PAFAH1B1(LIS1) gene[J]. Am J Med Genet A, 2011, 155A(4):875-879.] [ PubMed ] [ Google Scholar ]

20. VERROTTI A, PALKA C, PREZIOSO G, et al. Deletion 18p11.32p11.31 in a child with global developmental delay and atypical, drug-resistant absence seizures. Cytogenet Genome Res. 2015; 146 (2):115–119. doi: 10.1159/000438502.
[VERROTTI A, PALKA C, PREZIOSO G, et al. Deletion 18p11.32p11.31 in a child with global developmental delay and atypical, drug-resistant absence seizures[J]. Cytogenet Genome Res, 2015, 146(2):115-119.] [ PubMed ] [ CrossRef ] [ Google Scholar ]

Articles from Journal of Zhejiang University (Medical Sciences) are provided here courtesy of Zhejiang University Press